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叶绿素荧光技术高光谱成像技术植物表型剖析技术能量代谢丈量技术无人机遥感技术

FL6000双调制叶绿素荧光丈量仪

时间：2020-02-17

作者：球速体育

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简介：

FL6000双调制叶绿素荧光丈量仪

FL6000双调制叶绿素荧光仪是FL3500双调制叶绿素荧光仪的最新升级版，专门用于对蓝绿藻或绿藻等微藻，叶绿体或类囊体悬浮物进行光相助用深入机理研究的强大科研工具。仪器具备双通道丈量控制，可控制丈量样品的温度，并配备单翻转光（STF），内置多种可用户自行修改的丈量程序，可进行目前国际上关于叶绿素荧光的种种深入机理研究。其焦点结构是包括了一个悬浮液标准样品杯的光学丈量头，内置3组LED光源和1个1MHz/16位 AD 转换的PIN二极管信号检测器。AD转换的增益和积分时间可以通过软件控制。检测器丈量叶绿素荧光信号的时间区分率可高达4 ?s（快速版为1?s）。

应用领域：

·植物光合特性和代谢紊乱筛选

·生物和非生物胁迫的检测

·植物抗胁迫能力或者易感性研究

·代谢杂乱研究

·光合系统事情机理研究

·受胁迫植物光合生理应对战略研究

典范样品：

·蓝藻（蓝细菌）

·绿藻

·叶绿体悬浮物

·类囊体悬浮物

·植物碎片

功效特点：

·内置叶绿素荧光诱导丈量、PAM（脉冲调制）丈量、OJIP快速荧光动力学丈量、QA–再氧化动力学、S状态转换、叶绿素荧光淬灭等丈量程序，是世界上公认的功效最为全面的叶绿素荧光仪

·双调制技术，可双色调制丈量光，具备调制光化学光和连续光化学光，可进行STF（单周转光闪）、TTF（双周转光闪）和MTF（多周转光闪）及定制FRR技术（Fast Repetition Rate）丈量

·标准版时间区分率达4?s，快速版更高达1?s，是目前时间区分率最高的叶绿素荧光仪

·控制单位为双通道，可连接温度传感器用于温度控制、连接氧气丈量单位用于希尔反应丈量等

·具备极高灵敏度，最低检测极限为100ng Chla/L

·丈量光、光化光、饱和单反转光光源颜色、强度均可定制

·主机配备彩色触摸显示屏，可实时检察荧光曲线图

技术参数：

·实验程序：Kautsky叶绿素荧光诱导效应丈量；PAM（脉冲调制）荧光淬灭动力学丈量；OJIP快速荧光动力学丈量；QA–再氧化动力学；S状态转换；快速叶绿素荧光诱导

荧光参数：

úPAM荧光淬灭动力学丈量：丈量荧光淬灭动力学曲线，可盘算F₀，Fm，Fv，F₀’，Fm’，Fv’，QY(II)，NPQ，ΦPSII，Fv/Fm，Fv’/Fm’，Rfd，qN，qP，ETR等50多项叶绿素荧光参数；

úOJIP快速荧光动力学丈量：丈量OJIP快速荧光动力学曲线，可盘算F₀、FJ、Fi、Fm、Fv、VJ、Vi、Fm / F₀、Fv / F₀、Fv / Fm、M0、Area、Fix Area、SM、SS、N、Phi_P₀、Psi_₀、Phi_E₀、Phi_D₀、Phi_Pav、ABS / RC、TR₀ / RC、ET₀ / RC、DI₀ / RC等20多项相关参数；

úQA–再氧化动力学（QA- reoxidation kinetics）：丈量QA–再氧化动力学曲线，用于拟合QA–再氧化历程中快相（Fast phase）、中间相（Middle phase）和慢相（Slow phase）各自的振幅（A1，A2，A3）和时间常数（T1，T2，T3）

úS状态转换（S-state test）：丈量S-state test荧光衰减曲线，用于拟合盘算无活性光系统II （PSII_X）反应中心数量

ú闪光荧光诱导（Flash Fluorescence Induction，FFL，仅限快速版）：用于拟合盘算有效天线面积、天线连通性等

ú提供用户自界说protocol功效，可实现PSII天线异质性PSIIα与PSIIβ剖析、PSII有效天线截面积（s PSII）等参数的丈量（选配定制功效）

úQA–再氧化动力学曲线和S-state test荧光衰减曲线（Li，2010）

·时间区分率（采样频率）：高灵敏度检测器，标准版时间区分率为4?s，快速版为1?s

·最低检测极限：标准版100ng Chla/L，快速版1μg Chla/L

·控制单位：配备彩色触摸显示屏，可实时检察荧光曲线图

·丈量室：

o丈量光闪：623nm红橙光和460nm蓝光，光闪时间2–5?s

o单周转饱和光闪：最大光强170000 ?mol(photons)/m?.s，光闪时间20–50?s

o连续光化学光：最大光强3500 ?mol(photons)/m?.s

o荧光检测器：PIN光电二极管

oAD转换器：16bit

o样品试管：底面积10×10mm，容积4ml

定制丈量室（选配）：可划分定制丈量光、饱和光闪和光化学光颜色（蓝色、青色、琥珀色等）以及检测波段（ChlA，ChlB）
远红外光源（选配）：用于丈量F₀'，波长730nm

·氧气丈量�？椋ㄑ∨洌赫闪吭謇嗟难跗头�

·温度控制（选配）：TR 6000温度调理器，控温规模5–60℃，精确度0.1℃

电磁搅拌（选配）：用于样品混匀，避免样品沉淀，可手动调速或软件自动控制
通讯接口：RS232串口/USB

FluorWin软件：界说或创立实验计划、光源控制设置、数据输出、剖析处理和图表显示

典范应用：

1. 中科院水生生物所王强研究员使用FL3500叶绿素荧光仪（FL6000之前型号）和TL植物热释光系统证明亚硝酸盐胁迫首先影响Synechocystis sp. PCC 6803 PSII受体侧(Zhan X, et al, 2017)。这种光相助用深入机理的研究经常需要这两种仪器来配合完成。

2.中科院新疆生态与地舆研究所潘响亮研究员及其课题组使用FL3500叶绿素荧光仪（FL6000之前型号）深入开展了情况中重金属、盐分、有毒化合物、除草剂、杀虫剂、抗生素等种种有害物质对藻类的毒理研究。通过FL3500独吞的高区分率OJIP快速荧光动力学丈量、QA–再氧化动力学、S状态转换等叶绿素荧光丈量程序，全面揭示了差别浓度与处理时间对藻类光合系统造成损伤的毒理机制及其生态影响。目前，潘响亮课题组已经使用FL3500（FL6000之前型号）在国际SCI期刊与海内焦点期刊上宣布了二十余篇高水平文章。

产地：捷克

参考文献：

1. Manaa A, et al. 2019. Salinity tolerance of quinoa (Chenopodium quinoa Willd) as assessed by chloroplast ultrastructure and photosynthetic performance. Environmental and Experimental Botany 162: 103-114

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3. Liang Y, et al. 2019. Molecular mechanisms of temperature acclimation and adaptation in marine diatoms. The ISME journal, DOI: 10.1038/s41396-019-0441-9

4. Orfanidis S, et al. 2019. Solving Nuisance Cyanobacteria Eutrophication Through Biotechnology. Applied Sciences 9(12): 2566

5. Sicora C I, et al. 2019. Regulation of PSII function in Cyanothece sp. ATCC 51142 during a light–dark cycle. Photosynthesis Research 139(1–3): 461–473

6. Smythers A L, et al. 2019. Characterizing the effect of Poast on Chlorella vulgaris, a non-target organism. Chemosphere 219: 704-712

7. Albanese P, et al. 2018. Thylakoid proteome modulation in pea plants grown at different irradiances: quantitative proteomic profiling in a non‐model organism aided by transcriptomic data integration. The Plant Journal 96(4): 786-800

8. Antal T, Konyukhov I, Volgusheva A, et al. 2018. Chlorophyll fluorescence induction and relaxation system for the continuous monitoring of photosynthetic capacity in photobioreactors. Physiol Plantarum. DOI: 10.1111/ppl.12693

9. Antal T K, Maslakov A, Yakovleva O V, et al. 2018.Simulation of chlorophyll fluorescence rise and decay kinetics, and P700-related absorbance changes by using a rule-based kinetic Monte-Carlo method. Photosynthesis Research. DOI:10.1007/s11120-018-0564-2

10.Biswas S, Eaton-Rye J J, et al. 2018. PsbY is required for prevention of photodamage to photosystem II in a PsbM-lacking mutant of Synechocystis sp. PCC 6803. Photosynthetica, 56(1), 200–209.

11.Bonisteel E M, et al. 2018. Strain specific differences in rates of Photosystem II repair in picocyanobacteria correlate to differences in FtsH protein levels and isoform expression patterns. PLoS ONE 13(12): e0209115.

12.Fang X, et al. 2018. Transcriptomic responses of the marine cyanobacterium Prochlorococcus to viral lysis products. Environmental Microbiology, doi: 10.1101/394122.

13.Kuthanová Trsková E, Belgio E, Yeates A M, et al. 2018. Antenna proton sensitivity determines photosynthetic light harvesting strategy, Journal of Experimental Botany 69(18): 4483-4493

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